Histopatologia uszkodzenia komórki zwojowej siatkówki a diagnostyka i monitorowanie progresji jaskry

##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##

PDF


Opublikowane: mar 31, 2017
DOI: https://doi.org/10.24292/01.ot.310317.06
Słowa kluczowe:
laserowa polarymetria skaningowa, laserowa oftalmoskopia skaningowa, optyczna koherentna tomografia, warstwa włókien nerwowych siatkówki, kompleks komórek zwojowych, tarcza nerwu wzrokowego

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Marek E. Prost
Klinika Okulistyczna, Wojskowy Instytut Medycyny Lotniczej w Warszawie
Jaromir Wasyluk
Klinika Okulistyczna, Wojskowy Instytut Medycyny Lotniczej w Warszawie

Abstrakt

Wyniki najnowszych badań doświadczalnych dotyczących uszkodzenia różnych części komórek zwojowych siatkówki na poziomie mikroskopowym zostaną skorelowane z możliwościami i ograniczeniami różnych metod diagnostycznych w jaskrze. W pracy omówiono następujące badania obrazowe: perymetrię standardową statyczną i perymetrie niestandardowe, polarymetrię laserową GDx, oftalmoskopię skaningową HRT (Heidelberg Retinal Tomograph) i badania warstwy włókien nerwowych siatkówki (RNFL, retinal nerve fiber layer), tarczy nerwu wzrokowego (ONH, optical nerve head) oraz kompleksu komórek zwojowych (GCC, ganglion cell complex) w optycznej koherentnej tomografii (OCT, optical coherence tomography). Poszczególne metody diagnostyczne obrazują uszkodzenie jaskrowe różnych części komórki zwojowej siatkówki na różnych etapach zaawansowania neuropatii. Diagnostyka jaskry powinna się opierać na różnych metodach. Ich wybór zależy od tego, jakie elementy komórek zwojowych i innych części narządu wzroku chcemy zbadać, oraz czy chcemy ocenić wczesne uszkodzenie, chorobę bardziej zaawansowaną, czy też progresję zmian. Łączenie kilku metod zwiększa czułość i specyficzność wykrywania jaskry oraz poprawia wiarygodność jej monitorowania.

Pobrania

Dane pobrania nie są jeszcze dostepne

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Jak cytować
1.
Prost ME, Wasyluk J. Histopatologia uszkodzenia komórki zwojowej siatkówki a diagnostyka i monitorowanie progresji jaskry. Ophthatherapy [Internet]. 31 marzec 2017 [cytowane 18 maj 2024];4(1):36-1. Dostępne na: https://www.journalsmededu.pl/index.php/ophthatherapy/article/view/557
Numer
Tom 4 Nr 1 (2017)
Dział
Artykuły
Creative Commons License

Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Użycie niekomercyjne – Bez utworów zależnych 4.0 Międzynarodowe.

Copyright: © Medical Education sp. z o.o. License allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.

Address reprint requests to: Medical Education, Marcin Kuźma (marcin.kuzma@mededu.pl)

Bibliografia

1. Quigley HA, Dunkelberger GR, Green WR. Retinal ganglion cell atrophy correlated with automated perimetry in human eyes with glaucoma. Am J Ophthalmol. 1989; 107: 453-64.
2. Vrabec JP, Levin LA. The neurobiology of cell death in glaucoma. Eye. 2007; 21: S11-4.
3. Budak Y, Akdoğan M. Retinal ganglion cell death. In: Rumelt S (ed). Glaucoma basic and clinical research. InTech, Rijeka 2011: 33-56.
4. Feng L, Zhao Y, Yoshida M et al. Sustained ocular hypertension induces dendritic degeneration of mouse retinal ganglion cells that depends on cell type and location. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2013; 54(2): 1106-17.
5. Liu M, Duggan J, Salt TE et al. Dendritic changes in visual pathways in glaucoma and other neurodegenerative conditions. Exp Eye Res. 2011; 92: 244-50.
6. Liu M. Dendritic changes in visual pathways in glaucoma and other neurodegenerative conditions. [Praca na stopień doktora nauk medycznych]. University College London, London 2011.
7. El-Danaf RN, Huberman AD. Characteristic patterns of dendritic remodeling in early-stage glaucoma: evidence from genetically identified retinal ganglion cell types. J Neurosci. 2015; 35: 2329-43.
8. Lakkis G. The ganglion cell complex and glaucoma. Pharma. 2014; 3: 28-32.
9. Huang XR, Bagga H, Greenfield DS et al. Variation of peripapillary retinal nerve fiber layer birefringence in normal human subjects. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2004; 45: 3073-80.
10. Fortune B, Cull GA, Burgoyne CF. Relative course of RNFL birefringence, RNFL thickness and retinal function changes after optic nerve transection. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008; 49: 10: 4444-52.
11. Nickells RW. Mechanisms of retinal ganglion cell death. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012; 53: 2476-81.
12. Calkins DJ, Horner PJ. The Cell and Molecular Biology of Glaucoma: Axonopathy and the brain. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012; 53: 2482-3.
13. Yücel YH, Zhang Q, Gupta N et al. Loss of neurons in magnocellular and parvocellular layers of the lateral geniculate nucleus in glaucoma. Arch Ophthalmol. 2000; 118: 378-84.
14. Karaśkiewicz J, Lubiński W, Penkala K. Electrophysiological tests in evaluation of glaucoma and ocular hypertension treatment – up to date knowledge. A review. Klin Oczna. 2013; 115: 148-51.
15. Liu S, Yu M, Weinreb RN et al. Frequency-doubling technology perimetry for detection of the development of visual field defects in glaucoma suspect eyes: a prospective study. JAMA Ophthalmol. 2014; 132: 77-83.
16. Cordeiro MF, Migdal C, Bloom P et al. Imaging apoptosis in the eye. Eye. 2011; 25: 545-53.
17. Werkmeister RM, Cherecheanu AP, Garhofer G et al. Imaging of retinal ganglion cells in glaucoma: pitfalls and challenges. Cell Tissue Res. 2013; 353: 261-8.
18. Pircher M, Hitzenberger CK, Schmidt-Erfurth U. Polarization sensitive optical coherence tomography in the human eye. Prog Retin Eye Res. 2011; 30: 431-51.